Krevní stopy.

Site: Moodle Lékařské fakulty Univerzity Karlovy v Hradci Králové
Course: Laboratorní metody v soudním lékařství
Book: Krevní stopy.
Printed by: Guest user
Date: Thursday, 13 November 2025, 7:45 AM

Description

Krevní stopy.

1. Krevní stopy

Základní otázky:

• Jde o krev?
Je to lidská krev?
• Jaká je její skupinová příslušnost?
• Množství?
• Stáří?
• Původ krve?
Nůž znečištěný neznámou krví.

1.1. Krev

Krev je vysoce specializovaná tělesná tekutina, která se skládá z buněčných elementů rozptýlených v tekutém médiu - plazmě, která tvoří asi 50 - 55 % celkového objemu krve a která obsahuje červené a bílé krvinky (erytrocyty a leukocyty) a krevní destičky (trombocyty). Po vysrážení nativní krve vzniká krevní sérum.

Dědičné krevní znaky lze rozdělit do několika systémů - erytrocytární povrchové systémy, erytrocytární enzymatické systémy, leukocytámí systémy a systémy krevního iera. S ohledem na vysokou identifikační hodnotu genetické analýzy je v současné ciminalistické praxi využíván systém ABO(H), sporadicky systém MNSs, popř. určení Rh faktoru.

Krevní plazma obsahuje protilátky proti antigenům červených krvinek. Sérologickou aktivitu antigenů lze stanovit i v materiálu, který byl vystaven varu, zatímco aglutininy jsou inaktivovány po expozici teploty nad 60 °C.

Aglutinace (shlukování krvinek) se skládá ze dvou fází. V první fázi, neviditel­né, se vážou protilátky na receptory aglutinogenů. Tato fáze je specifická, neboť na receptor se může vázat jen příslušný aglutinin. V druhé fázi, viditelné, začíná vlastní shlukování - aglutinace erytrocytů. Tato druhá fáze je nespecifická, podmíněná fyzikálně-chemickou reakcí. Přítomnost aglutinogenů v krvinkách je vrozená, je geneticky podmíněna. Každý aglutinogen, a tedy i každá krevní skupina, je podmíněn jedním otcovským a jedním mateřským genem. Ve skupinovém systému ABO(H) rozeznáváme tři geny A, B a kdy geny A a B jsou dominantní a gen 0 recesivní. Tento gen se fenotypově projeví tehdy, jestliže je v genotypu v homozygotní formě. Krevní skupiny mohou mít genotypický projev AA, AO, BB, BO, 00 a AB. Skupinové vlastnosti jsou prokazatelné již u plodu od 3. - 4. týdne života. Plné síly aglutinogen dosahuje kolem 18. - 20. roku. Někdy může dojít k fenotypickému útlumu antigenů A a B. Krevní skupina se pak jeví jako skupina 0 s chybějícím aglutininem anti-A, resp. anti-B.

V  rámci jednotlivých etnických skupin existují rozdíly v zastoupení krevních skup: V České republice je průměrné rozvrstvení krevních skupin následující: A - 42  %, B - 18 %, 0 - 32 %, AB - 8 %, Rh+ - 85 %, Rh- - 15 %.

1.2. Detekce krevních stop

Krevní skvrny jsou většinou viditelné prostým okem. Špatně je krev patrná na tmavých vsakavých látkách. V rámci trestné činnosti se často setkáváme s pokusy o odstranění krve z oděvu nebo předmětů. Možnost jejich odstranění závisí na charakteru a vlastnostech podkladového materiálu a na činidle použitém ke zničení krevních stop. Většinou však lze i po použití detergentů nebo jiných agresivních činidel prokázat minimální množství krevního materiálu.

Krevní stopy jsou stabilní, pokud se nacházejí v suchém stavu a nejsou vystaveny přímému slunečnímu záření (resp. jinému záření). Ve vlhkém prostředí podléhají snadno degradaci vlivem bakteriální kontaminace. Aglutinogeny jsou s ohledem na svou chemickou podstatu odolnější vůči teplotě (varu) než aglutininy, které jsou bílkovinné povahy.

Detekci krevních stop a aplikaci orientačních zkoušek lze provést jak na místě činu, tak v laboratoři.

1.3. Nespecifické metody

  • Plošná detekce (perioxidázové zkoušky) - ke zviditelnění latentních stop se používají chemická činidla a vhodné osvícení. K vyhledávání „neviditelných“ krevních skvrn lze úspěšně využít fialové světlo o vlnové délce v rozsahu 380 - 400 nm. Jsou známa barviva na zviditelňování krevních stop, např. amidová čerň, benzidin, malachitová zeleň, luminol nebo fenolftalein. Většina zkoušek využívá aktivity krevní peroxidázy a katalázy, které mají schopnost štěpit peroxid vodíku, jenž je vázán v činidle nebo v indikační plošce detekčních proužků. Reakcí uvolněný kyslík reaguje s barvotvomou složkou obsaženou rovněž v roztoku či v plošce proužku (např. o-tolidin) za vzniku chemoluminiscence či změny zbarvení indikační plošky. Peroxidázové zkoušky se vyznačují vysokou citlivostí, ale z hlediska detekce i vyšetření krve také nízkou specifičností, protože peroxidázy a katalázy se vyskytují v rostlinných pletivech, ovocných šťávách, hnisu aj. Zelenání reagenčních proužků vyvolávají i sloučeniny železa na povrchu korodovaných materiálů.

           Potřeby k peroxidázové zkoušce.                 Pozitivní reakce peroxidové zkoušky charakteru zpěnění peroxidu naneseného na skrvnu.

  • Bluestar® Forensic™ je patentované barvivo vyvinuté speciálně pro práci na místě trestného činu při vyhledávání latentních krevních stop. Je vhodné při práci interiéru i v exteriéru, na zaschlé, umyté nebo silně zředěné stopy. Vzhledem k tomu, že nepoškozuje strukturu DNA, lze krevní stopu dále použít pro genetické zkoumání. Možnou přítomnost krve indikuje emitované modré luminiscenční světlo. Bluestar dává falešně pozitivní reakci s některými prostředky obsahujícími chlor, i některými barvami, laky, mědí a rostlinami obsahujícími železo, např. lišejníky.

 

  • Luminová zkouška - po postříkání je patrná luminiscence namodralé barvy. Zkouška je značně nespecická, bývá pozitivní i se skvrnami od ovoce, zeleniny, rzi, s některými kovy apod. Podmínkou aplikace je tma nebozatemnění (eliminace rušivých zdrojů světla).

           Sada činidel k luminové zkoušce.                Pozitivní reakce luminolové zkoušky charakteru světelkování naneseného roztoku na skvrnu při zatemnění. 

  • Lokalizovaná detekce - provádí se pomocí de­tekčních proužků, které se využívají ke klinickému vyšetření krve v moči. Pozitivní výsledek, resp. možnost výskytu krve, indikuje intenzivní, téměř okamžitě vznikající modrozelené zbarvení indikační plošky.

1.4. Specifické metody

Ke specifickému průkazu krve se využívají zpravidla mikrokrystalografické a spek­troskopické metody. Principem těchto metod je průkaz hemoglobinu, případně jeho derivátů v rámci mikrokrystalografických zkoušek.

  • Bertrandova zkouška - hemoglobin tvoří s ledovou kyselinou octovou v přítomnosti chloridu hořečnatého při teplotě 120 °C krystalky acetchlorheminu. Jsou to hnědé až hnědočervené krystalky obdélníkového či kosočtverečného tvaru.  Metoda je rychlá, citlivá a specifická.

           Potřeby pro Bertrandovu zkoušku.     Charakteristický obdélnikový a kosočtverečný tvar krystalků acetchlorheminu.

  • Hemochromogenová zkouška dle Takayamy - použité činidlo (10% roztok glukózy 5 ml, 10% hydroxid sodný 10 ml, destilovaná voda 65 ml, pyridin 20 ml) vede po zahřátí vzorku za přítomnosti krve ke vzniku hemochromogenových krystalků, které mají růžovou až oranžově červenou barvu a jsou dosti pestrého vzhledu - od drobných pentliček až k obrazu sněhových vloček a tvarům, které připomínají námrazu na skle. Zkouška je rovněž specifická a dává dobré výsledky i se skvrnami starými, zahřátými, hnijícími nebo byla-li skvrna ve styku se zásadami či kyselinami.

          Charakteristický vzhled krystalků hemochromogenu tvaru pentliček až obrazu sněhových vloček či namrázy na skle.

  • Mikrospektroskopická zkouška - spočívá v průkazu spektra hemochromogenu vzniklého reakcí hemoglobinu s činidlem užívaným ve zkoušce dle Takayamy. Reakci provedeme na podložním skle a spektrum pozorujeme v mikrospektroskopu, který lze nasadit přímo na tubus mikroskopu. Charakteristické jsou dva absorpční pruhy - jeden sil­nější mezi čarami D a E, další slabší přesahující čáru E.

  • Hematoporfyrinová zkouška - vychází z reakce hematoporfyrinu s koncentrovanou kyselinou sírovou, která se projeví živě červenou fluorescencí v UV světle po nanesení kapky kyseliny sírové na zkoumaný vzorek. Metoda je velice citlivá, daří se často i u krevních skvrn naru­šených praním, hnilobou a některými chemickými látkami. Nevýhodou metody je znehodnocení použitého vzorku pro jakékoliv další vyšetření.

  • Malachitová zeleň - spolehlivé barvivo rozpustné ve vodě, které prokazuje přítomnost krve. Je vysoce citlivé.

  • HexagonOBTI - je určen nejen na stanovení přítomnosti krve, ale také na prokázání jejího lidského původu. Test je založen na imunochemické detekci he­moglobinu reakcí s monoklonální protilátkou proti lidskému hemoglobinu. Test má vysokou citlivost i při vysokém nařední krve.

  • Imunochromatografický test RSID (Rapid Stain Identification) - je založen na reakci dvou monoklonálních protilátek proti lidskému glykoforinu A, což je protein obsažený v membránách červených krvinek, který zabraňuje jejich shlukování. Test nevykazuje křížovou reakci s jinými lidskými tělními tekutinami (např. slinami, spermatem, močí, mlékem) nebo s krví zvířat (včetně primátů).

1.5. Určení druhové příslušnosti

Jestliže prokážeme ve zkoumané skvrně krev, je důležité zjistit, zda jde o krev lidskou, event. jakému živočišnému druhu náleží. Tento důkaz nelze v žádném případě opominout a má vždy - i při nedostatku vyšetřovaného materiálu - před­nost před zjišťováním dalších identifikačních znaků (např. krevních skupin). Podstatou je průkaz lidské bílkoviny (ev. bílkoviny jiného živočišného druhu) ve skvrně. Z klasických metod se nejčastěji využívá imunoprecipitační reakce, která je dostatečně citlivá a svým provedením poměrně jednoduchá. Jde o zjištění druhově specifické bílkoviny přítomné v krevní skvrně, která s přidaným sérem (protilátkou) precipituje. Testovací precipitační sérum se získává imunizací jiného živočišného druhu. K vlastní precipitaci dochází v místě optimálních koncentraci navzájem se prolínajících a reagujících látek, tj. bílkoviny ze skvrny a precipitačního séra.

          Pozitivní imunoprecipitační reakce charakteru valu mezi 1 a centrální jamkou. 

Vyšetření se provádí těmito metodami:

  • Klasickou Uhlenhutovou zkouškou v tekutém prostředí z výluhu zkoumané skvrny do fyziologického roztokku, a to ve zkumavkách, popř. v kapilárách, kdy po převrstvení výluhu ze skvrny sérem proti lidské bílkovině se u pozitivní reakce do někalika minut vytvoří v místě optimálních koncentrací (lidské bílkoviny a precipitačního séra proti lidské bílkovině) opaleskující prstencový zákal, který můžeme dobře pozorovat v dopadajícím světle proti tmavému pozadí. Po delší době prstencový zákal mizí a précipitát ve vločkách klesá ke dnu. Vždy je nutno stejným způsobem provést i kontrolní vyšetření s výluhem z nepotřísněné podložky, na němž byla zkoumaná skvrna, s nimiž reakce použitého séra musí být negativní. Naopak současně provedené kontrolní vyšetření séra s bilkovinou příslušného živočišného druhu, proti kterému je sérum určeno, musí být pozitivní.
  • Dvojitou radiární imunodifuzí v agaru dle Ouchterlony v pololuhém prostředí do jamky v agaru. Časově i nárokem na množství materiálu však lépe vyhovuje přímé vyšetření přímé vyšetření části skvrny, které se v jamce agarové plotny po opakovaném zakápnutí fyziologickým roztokem přímo vyluhuje a bílkovina skvrny difunduje v agaru proti precipitačním sérům umíslčným v jamkách uspořádaných do tvaru rozet ve čtyřúhelníku či pětiúhelníku. Za 24 hodin můžeme při pozitivní reakci pozorovat v agaru vznik bělavých precipitačních linií, kleré nacházíme mezi jamkou s precipitačním sérem a jamkami s obsahem bílkoviny příslušného živočišného druha. Metoda je výhodná nejen pro svoji citlivost, ale též pro možné zvýraznění výsledků obarvením např. amidočerní, což umožňuje dlouhodobou archivaci.

  • Elektroimunoprecipitací v agaru, kdy je pohyb částic urychlen v elektrickém poli. Výhodou je rychlé získání výsledku při vyšetření eluátu ze skvrny. Nicméně vzhledem k potřebnému času na vyluhování skvrny nepředstavuje toto vyšetření podstatnější časové zkrácení ve srovnání s přímo (tj. bez předcházející eluce) pro­váděnou imunodifuzí.
  • Antiglobulinovým testem, kdy metoda využívá poznatku, že erytrocyty (0 Rh+), které jsou senzibilizované inkompletním sérem anti-D (Rh), aglutinují teprve po přidání séra proti lidskému globulinu (sérum anti-globulinum humanum /SAGH/). Vyšetřujeme výluh ze zkou­mané skvrny. Jestliže ve výluhu z krevní skvrny je přítomen lidský globulin, vy­váže přidané sérum proti lidskému globulinu (SAGH) a zabrání tak hemaglutinaci přidaných připravených senzibilizovaných krvinek (0 Rh+). Pozitivní reakcí, která dokazuje lidskou krev ve skvrně, je tedy inhibice hemaglutinace.

Pomocí precipitačních sér proti bílkovinám živočišných druhů můžeme prokázat ve stopách i jejich krev (např. králičí, prasečí apod.), popř. zjistit, zda skvrna neobsahuje směs krví. Při posuzování přítomnosti bílkoviny příslušného živočišného druhu ve skvrně musíme počítat s příbuzenskou pozitivní reakcí, a to zejména u těchto druhů: člověk - antropoidní opice, kůň - osel - mula - mezek, koza - ovce - muflon, srnec - jelen - daněk, králík - zajíc, slepice - holub - husa - kachna - krocan.

 

1.6. Určení skupinových vlastností

Krevní skvrna vzniká z plné krve a obsahuje skupinové systémy, které jsou obsa­ženy v krvi a mají význam pro identifikaci. Tyto skupinové systémy se vyznačují různou odolností proti vlivům zevního prostředí a lze je proto prokazovat nestejně dlouhou dobu od vzniku krevní skvrny. Pocházejí z erytrocytů (např. systém ABO, znaky MN, faktor Rh, Kell, P, Duffy, Lewis, Lutheran, enzymové systémy), z lymfocytů (např. HLA systém) nebo ze séra.

Vyšetření krevních skupin A, B, 0, AB

V krevních skvrnách mohou být až po týdny zachovány aglutininy, zatímco skupi­nové substance A, B, H lze prokázat i po řadě let (záleží na prostředí, ve kterém se krevní skvrna nachází).

Průkaz aglutininů:

  • Metoda Lattesova: Aglutininy jsou prokazovány ve skvrně nebo její části pomocí náplavu testovacích erytrocytů známé krevní skupiny - A a B. Pokud jsou v krevní skvrně přítomny aglutininy, způsobí aglutinaci přidaných testovacích erytrocylů příslušné krevní skupiny. Na základě hemaglutinace pak lze usuzovat, které aglutininy jsou ve zkoumané krevní skvrně přítomny, což umožní definovat skupinovou vlastnost krve. Vyšetření se provádí obvykle na podložním sklíčku a po fázi inkubace ve vlhké komůrce se přítomná aglutinace testovacích krvinek hodnotí mikroskopicky. Podrobné vyšetření je nutno vždy doplnit průkazem skupinových substancí A, B, H (aglutinogenů) ve skvrně.
  • Metoda dle Laupyho: Jde o modifikaci předcházející metody s tím, že vyšetření aglutininů skvrny probíhá ve zkumavkách. Je tak vytvořen lepší předpoklad pro odstranění případných artefaktů.

 

           Sada pro určování krevních skupin. 

           Přiklady určování krevní skupiny pomocí testovacích erytrocytů a antisér:

           V prvním řádku výsledkem krevní skupina "B M", v druhém řádku krevní skupina "O M".                                                                          

Průkaz krevních skupinových substancí A, B, H:

Poněvadž v krevní skvrně již nejsou zachované plnohodnotné erytrocyty, je nutné skupinové substance, přítomné na membránách rozpadlých krvinek, prokazovat jinými metodami než při vyšetření plné krve. Užívané metody vycházejí z poznatku, že pokud krevní skvrna obsahuje některou ze skupinových substancí (A, B, H), nastane po přidání příslušné protilátky (anti-A, anti-B, anti-H) ve fázi absorpce vazba protilátky na odpovídající skupinovou substanci, kdy pak pouze zjišťujeme, zda k vazbě protilátky na skupinovou substanci skutečně došlo. Metodou vysycovací prokazujeme míru vysycení (snížení titru) nenavázané použité protilátky, metoda absorpčně eluční a metoda smíšené aglutinace naopak prokazuje navázanou protilátku, a to buď po její eluci (metoda absorpčně eluční) nebo přímo na zkoumaném objektu (metoda smíšené aglutinace).

  • Vysycovací metoda dle Therkelsena (někdy nazývaná metodou absorpčně inhibiční): Principem této metody je průkaz absorpce protilátek anti-A, anti-B nebo anti-H na skupinové substance zkoumané krevní skvrny. Míru vysycení protilátek hodnotíme na základě poklesu jejich titru. Přidáme-li ke krevní skvrně protilátku (anti-A, anti-B či anti-H), pak při přítomnosti některé ze skupinových substancí (A, B či H) dojde ve fázi absorpce k vazbě protilátky a titr použité protilátky se sníží (resp. protilátka bude v důsledku vzniklé vazby do určité míry vysycena). Vyšetření se provádí ve zkumavkách (nebo na mikrotitračních destičkách), kde v jedné řadě zkumavek (nebo jamek) je geometrickou řadou ředěna fyziologickým roztokem protilátka anti-B, ve druhé řadě protilátka anti-A. Titr protilátky pak určíme podle aglutinace homologních testovacích erytrocytů přidaných do každé zkumavky. Míru vysycení posoudíme porovnáním zjištěného titru po absorpci s výchozím titrem protilátky.

          

         Absorpčně inhibiční metada na mikrotitrační destičce, kde jsou pod písmenem A a B testovány 2 různé krevní vzorky, v první sérii jamek je testovaný vzorek, v druhé kontrolní vzorek a ve 3. řadě inertní materiál, který slouží jako druhá     kontrola. Výsledkem skupiny "A" a "AB".

  • Metoda smíšené aglutinace: Ve fázi absorpce dojde k vazbě příslušné protilátky (anti-A, anti-B, anti-H) na sku­pinovou substanci skvrny. Při následném promytí chladným fyziologickým roztokem vyplavíme veškeré nenavázané protilátky. Poté náplavem testovacích homologních erytrocytů ověřujeme přítomnost navázané protilátky, která kromě vazby na skupinovou substanci krevní skvrny je schopna ještě aglutinovat testova­cí erytrocyty. Aglutinaci hodnotíme mikroskopicky v různých časových odstupech (za 1, 2, 4, 6 i více hodin) přímo na zkoumaném vzorku, např. na krví potřísněném vláknu.

           Mikroskopické hodnocení aglutinace erytrocytů. 

  • Metoda absorpčně eluční (Nicholls-Pereira): První fáze představuje absorpci protilátky (anti-A, anti-B či anti-H) na přítomnou skupinovou substanci (A, B či H). Při následném promytí chladným fyziologickým roztokem se vyplaví veškeré nenavá­zané protilátky. V následující fázi eluce pak dojde k uvolnění navázané protilátky z vazby na skupinovou substanci. Eluce probíhá ve zkumavkách obvykle do malé­ho množství fyziologického roztoku při 56 °C v termostatu. Po oddělení eluátu od původního vzorku a po jeho zchladnutí je prokazována přítomnost eluované proti­látky přidáním testovacích homologních erytrocytů. Hodnocení se provádí ve zkumavkách makroskopicky.

Při zjišťování krevních skupinových vlastností je vhodné dodržovat určité zása­dy. Vždy kromě samotné krevní skvrny vyšetřujeme též krví nepotřísněnou podložku, na které se skvrna nalézá. Dojde-li k pozitivní reakci pouhé podložky s některou protilátkou (anti-A, B či H), tak nám to obvykle znesnadní, resp. omezí interpretaci výsledků vyšetření krevní skvrny.

Při dostatečném množství materiálu zkoumaného vzorku provádíme zásadně vyšetření dvěma metodami. Někdy je možno využít kombinaci metody vysycovací a absorpčně elučního testu, kdy po fázi absorpce je jednak změřen titr použité pro­tilátky (metoda vysycovací), jednak je vzorek dále vyšetřen metodou absorpčně eluční. Někdy se tento postup nazývá dvojokruhový systém. Volba metody k vyšetření skupinových vlastností krevní skvrny je ovlivněna zejména dostupným množstvím materiálu k vyšetření a do určité míry též podlož­kou, na které se krevní skvrna nachází. K nejnáročnějším na spotřebu materiálu patří metoda vysycovací (asi 30 - 40 mg krve), podstatně méně náročná je absorpč­ně eluční metoda, nejcitlivější je smíšená aglutinace, kterou lze vyšetřovat např. i  fragmenty vláken potřísněných krví. Pouze u metody vysycovací můžeme provést vyšetření šupinek zaschlé krve přímo, pro absorpčně eluční test a smíšenou aglutinaci musí být krevní skvrna na nosiči - podložce, na které je její zpracování prováděno. Čerstvou krevní skvrnu - pro její rychlou rozpustnost - je vhodné před užitím absorpčně elučního testu nebo metody smíšené aglutinace fixoval (např. zvlhčením metanolem). Při výskytu skupinové substance A lze výše uvedenými metodami v krevní skvrně většinou posoudit i nejčastější podskupiny A1, A2. K vyšetření bývají často užívány lektiny anti-A1 a anti-H.

Krevní skupinové vlastnosti systému ABO(H) jsou relativně stabilní a lze je do­kázat i po velmi dlouhé době, ale vlivem enzymů některých mikroorganismů mohou ryt narušeny, případně změněny.

 

Vyšetření znaků MN

K vyšetření lze využívat shodné metody, kterými prokazujeme v krevní skvrně sku­pinové substance A, B, H. Obecně platí, že důkaz MN znaků v krevních skvrnách je obtížnější než u skupinových substancí A, B, H, a to zejmé­na u starších krevních skvrn. Jen zcela výjimečně se dařil ještě u krevních skvrn starých 1 rok.

 

Vyšetření Rh-faktoru

Prokazujeme typy C, c, D, d, E, e s použitím příslušných, většinou monoklonálních protilátek. Pro vyšetření se nejlépe osvědčila absorpčně eluční metoda. Průkaz se daří někdy ještě u skvrn půl roku starých, jindy po dobu podstatně kratší.

1.7. Určení pohlaví z krevní skvrny

Průkaz sex-chromatinu

Sex-chromatin se u žen nachází jako paličkovitý přívěsek na jádrech polymorfonukleárů. Je možné ho v nátěru z krevní skvrny po fixaci znázornit Feulgenovou reakcí, resp. Diamantfuchsinem, kdy se barví červenofialově. Vždy prohlížíme mikroskopicky v imerzi větší počet (alespoň 100, lépe 200) polymorfonukleárů.

 

Průkaz Y-chromozomu

Po fixaci nátěru z krevní skvrny a jeho obarvení pomocí Quinacrin mustard prokazujeme Y-chromozom ve fluores­cenčním mikroskopu jako drobné fluoreskující tělísko na vnitřní straně jaderné membrány lymfocytů. Četný nález, zejména při velkém počtu pro­hlédnutých buněk (100 - 200) svědčí pro skutečnost, že krev ve skvrně pochází od muže.

Fluorescence Y-chromozomu navíc svědčí pro druhovou příslušnost (lidský původ), neboť jiné živočišné druhy zmíněnou fluorescenci nevykazují.

 

Průkaz hormonálních hladin

Citlivými metodami - např. radioimunoesejí - lze i v krevní skvrně zjistit rozdíly hladin některých mužských a ženských hormonů, zejména testosteronu, progesteronu a estradiolu.

1.8. Původ krevních stop

Z krevní stopy se dále snažíme upřesnit údaje o jedinci, který krvácel, popř. určit i místo na těle, odkud krvácení vzniklo.

Menstruační krev

  • Mikroskopický průkaz - vychází z nálezu poševních epitelií, hlenu, četných bakterií a prakticky chybějící fibrinové sítě. Barvením na glykogen můžeme ozřejmit jeho přítomnost v epitelových buňkách, avšak nejde o průkaz specifický, neboť se nachází i v buňkách uretry.
  • Průkaz fibrinolytické aktivity menstruační krve - přítomnost fibrinolyzinu prokazujeme ve výluhu z krevní skvrny. V místě jeho nanesení na fibrinový plát nastane po inkubaci v termostatu za 10 až 12 hodin rozpuštění (lýza) fibrinového plátu. Vyšetření není zcela specifické, fibrinolýzu mohou způsobit např. i některé bakte­rie pomnožené v zaschlé krevní skvrně.

 

Těhotenská krev

Její určení má značnou důležitost při podezření na vraždu novorozeného dítěte či kriminální potrat. K průkazu se používají:

  • Běžné těhotenské testy (kvalitativní imunoanalýza), které jsou určeny pro kvalitativní stanovení lidského choriogonadotropinu (hCG) ve vzorku krve  nebo moči. Lidský choriogonadotropin je glykopeptidový hormon produkovaný placentou v průběhu těhotenství.
  • Imunologický test průkazem choriongonadotropinu, kdy princip reakce spočívá v inhibici hemaglulinace. Senzibilizované krvinky jsou aglutinovány sérem proti choriongonadotropinu tehdy, jestliže toto sérum není vázáno choriongonadotropinem zkoumané krevní skrvny. Aglutinace se projeví žlutohnědou sraženinou v centru dna reagenční zkumavky negativní výsledek. Naopak inhibice hemaglutinace je charakterizována vznikem hnědého prstence po obvodu dna zkumavky a znamená pozitivní reakci, neboť choriongonadotropin skvrny vázal sérum, které pak již nemohlo aglutinaci vyvolat
  • Hyperémický test vychází z účinku choriongonadotropinu obsaženého v těhotenské (tedy i krevní skvrně), který po injekční aplikaci výluhu ze skvrny infantilním bílým krysám u nich vede k hyperemii ovárií.

 

Krev plodová, novorozenecká, kojenecká

  • Zjištění alfa-1-fetoproteinu pomocí specifické protilátky imunoprecipitační reakcí dvojitou radiámí imunodifuzí v agaru, popřípadě elektroimunoprecipitací. Koncentrace alfa-1-fetoproteinu dosahuje maxima 11 .- 14. týdnem nitroděložního života. Nevyskytuje se u dětí starších 6 - 7 měsiců a dospělých jedinců.
  • Průkaz rezistence hemoglobinu proti alkáliím a kyselinám - Hemoglobin plodu (Hb F) novorozence i kojence je podstatně odolnější vůči alká­liím i kyselinám než hemoglobin (Hb A) dospělých. Zmíněná rezistence přetrvává někdy až do věku 6. - 7. měsíců. K vyšetření se používá roztok 2% hydroxidu draselného, který se ve stejném množství přidá k výluhu ze zkoumané krevní skvrny. Vzniká postupně alkalický hematin, což se projevuje změnou barvy. U výluhu z krevní skvrny dospělého člověka dochází k uvedené změně do několika minut; jestliže krev pochází z plodu, novorozence či kojence, trvá přeměna podstatně déle (někdy 4 ho­diny i více). Obdobně lze provést vyšetření i s kyselinou chlorovodíkovou, kdy za obdobných podmínek a časových relací vzniká kyselý hematin. Vždy je nutno pro kontrolu provést souběžně vyšetření známých vzorků krve z novorozence i dospě­lého.
  • Průkaz adultního a fetálního hemoglobinu - např. papírovou chromatografií v horizontální kruhové úpravě nebo elektroforeticky.

 

1.9. Určení stáří krevní skvrny

Stáří krevních skvrn přesně určit nedovedeme. Skvrna podléhá různým zevním vli­vům (sluneční světlo, vlhkost, vysušení, podložka, mikroorganismy, plísně, rez, čisticí prostředky aj.), kterým je vystavena. Tím ve skvrně probíhají rychleji nebo pomaleji změny, které se snažíme k určení doby vzniku krevní skvrny využít.

  • Chloridový test - Ionty chloru, které jsou obsaženy v krevní skvrně, pronikají v závislosti na čase do jejího okolí. Rychlost pronikání iontů je však významně ovlivněna i vlhkostí vzdu­chu a charakterem podložního materiálu. Princip průkazu spočívá v převedení iontů chloru na chlorid stříbrný s následnou redukcí na amorfní stříbro, které lemuje v různé šíři zkoumanou krevní skvrnu. Podle šíře lemu vyredukovaného stříbra lze s velkou opatrností usuzovat na dobu vzniku krevní skvrny. Vždy je třeba vzít v úvahu i podmínky, ve kterých byla krevní skvrna nalezena.

  • Spektrofotometrie - stárnutí krevní skvrny se díky přeměnám krevní­ho barviva projevuje i změnami absorpčního spektra v oblasti viditelného světla. Nejvhodnější se jeví změny poměrů absorpčního maxima při 578 nm a 560 nm. Poměry absorpčních maxim uvedených vlnových délek vykazují v závislosti na čase postupný pokles, který je nejzřetelnější a pro hodnocení nejpříznivější zejmé­na zpočátku, asi do 1 měsíce stáří krevní skvrny. Na rozdíl od chloridového testu nejsou výsledky ovlivněny vlhkostí prostředí, ale spíše teplotou, ke které je vhod­né při konečném odhadu stáří krevní skvrny přihlédnout.

1.10. Určení množství krve

Vyšetření obvykle využívá poznatku, že ve 100 ml krve je cca 16 g hemoglobinu.

  • Metoda Strassmannova-Ziemkeova, kdy je hemoglobin skvrny na podložce nebo ze země vyluhován s následným kolorimetrickým a spektrofotometrickým stanovením.